Dépistage et prise en charge de la thrombopénie fœtale et néonatale allo-immune
Auteures : Dre Danielle Meunier et Dre Gwen Clarke, FRCPC
Date de publication : Mai 2020
Principaux publics cibles : Technologues de laboratoires médicaux travaillant dans un laboratoire d’hôpital, médecins spécialistes en transfusion
Points clés
- La thrombopénie fœtale et néonatale allo-immune (TFNAI) est une cause de thrombopénie d’origine immune chez les nouveau-nés causée par les anticorps anti-HPA (antigènes plaquettaires humains) de la mère, généralement les anticorps anti-HPA-1a.
- L’hémorragie intracrânienne (HIC) est une complication grave de la TFNAI qui touche 1 naissance vivante sur 10 000.
- L’épreuve diagnostique de la TFNAI se fait en trois étapes principales :
- Dépistage et identification des anticorps anti-HPA maternels;
- Génotypage d’un échantillon du sang de la mère, du père et/ou du nouveau-né pour identifier les gènes HPA;
- Confirmation de la spécificité des anticorps et de leur réactivité à l’aide du test MAIPA (monoclonal antibody immobilization of platelet antigens).
- Si elles sont disponibles immédiatement, il faut transfuser des plaquettes HPA compatibles au nouveau-né souffrant de TFNAI. Si elles ne sont pas disponibles, il faut administrer des unités issues de donneurs aléatoires (pool de plaquettes) en attendant d’obtenir des plaquettes compatibles.
Thrombopénie néonatale
Chez le nouveau-né, la thrombopénie se définit par une numération plaquettaire inférieure à 150 x 109/l et est considérée comme grave si la numération plaquettaire passe en deçà de 50 x 109/l1. La thrombopénie néonatale peut être causée par une diminution de la production de plaquettes (souvent d’origine congénitale), ou, plus couramment, par une destruction ou consommation accrue des plaquettes résultant par exemple d’une septicémie, de la prise de médicaments, d’une entérocolite nécrosante néonatale, d’une coagulation intravasculaire disséminée (CIVD), d’une insuffisance placentaire ou d’une asphyxie. L’augmentation de la consommation de plaquettes peut également être d’origine immune en raison de la TFNAI, ou plus rarement d’un purpura thrombopénique immunologique ou idiopathique maternel2.
Qu’est-ce que la thrombopénie fœtale et néonatale allo-immune?
La thrombopénie fœtale et néonatale allo-immune est une complication rare, mais potentiellement grave, de la grossesse causée par une destruction d’origine immune des plaquettes fœtales par les alloanticorps maternels. Elle peut survenir à chaque fois qu’il y a une incompatibilité entre les plaquettes fœtales et maternelles en raison d’un antigène hérité du père. L’incidence de la TFNAI est estimée entre 1 sur 1 000 et 1 sur 1 500 naissances vivantes. Toutefois, la véritable incidence est probablement plus élevée, car elle n’est souvent pas prise en compte dans les cas de fausse couche ou de mort fœtale intrautérine
Le tableau clinique de la TFNAI est très variable et peut inclure la thrombopénie asymptomatique; un léger saignement prenant la forme de pétéchies, d’hématomes, de petites hémorragies viscérales, d’une hématurie transitoire ou de selles sanguinolentes; ou une hémorragie grave, notamment dans les organes majeurs et le crâne1, 7, 8. Une hémorragie intracrânienne se produit dans 10 à 25 % des cas diagnostiqués de TFNAI, de nombreux cas étant détectés in utero au cours des deuxième et troisième trimestres9. Cette complication de la TFNAI est source de crainte, car elle peut entraîner des déficits neurologiques permanents ou la mort fœtale ou néonatale5.
HPA et TFNAI
Les épitopes d’antigènes plaquettaires humains (HPA) s’expriment sur cinq glycoprotéines clés à la surface membranaire des plaquettes. Trente-sept HPA sont actuellement décrits, dont 22 sont généralement considérés d’intérêt clinique (tableau 1). Les glycoprotéines, dont GPIIIa, GPIb,et GPIa et GPIIa, participent à des fonctions plaquettaires essentielles, comme l’adhésion, l’agrégation et la formation du clou plaquettaire. Les anticorps anti-HPA-1a, un épitope de GPIIIa, sont la cause la plus courante de TFNAI et sont impliqués dans 80 % environ des thrombopénies chez les personnes d’origine caucasienne7, 10, devant les anticorps anti-HPA-5b, anti-HPA-15b et anti-HPA-3a, qui sont responsables de 10 à 15 %, 4 % et 1 à 2 % des cas respectivement. D’autres antigènes HPA sont impliqués à des taux inférieurs à 1 %. Chez les populations asiatiques, les anticorps anti-HPA-5b sont la cause la plus courante de TFNAI, suivis des anticorps anti-HPA-4b11.
L’incidence de la TFNAI causée par les anticorps anti-HPA-1a est illustrée à la figure 1. Bien que les grossesses HPA-1a négatives soient courantes, l’hémorragie intracrânienne due à une TFNAI l’est bien moins.
Tableau 1 : Antigènes HPA spécifiques et leurs glycoprotéines et classe de différenciation (CD) correspondantes. Adapté de Metcalfe, 20046.
Figure 1 : Épidémiologie de la TFNAI due aux anticorps anti-HPA-1a. Adapté de de Vos et al., 20195. Autorisé en vertu de CC BY 4.0 (https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/) / Couleurs modifiées par rapport à l’original.
Physiopathologie de la TFNAI
Le mécanisme de la TFNAI est semblable à celui de la maladie hémolytique du fœtus et du nouveau-né (MHFN). L’exposition maternelle à un HPA incompatible hérité du père sur les plaquettes fœtales provoque une allo-immunisation et la formation d’anticorps anti-HPA chez la mère. Puisqu’il s’agit d’anticorps IgG, ils peuvent facilement traverser le placenta et se fixer aux plaquettes fœtales, qui sont ensuite éliminées de la circulation sanguine par phagocytose. Certains anticorps anti-HPA, dont l’anticorps anti-HPA-1a, peuvent également entraîner une réduction de la production de plaquettes en raison d’une suppression des mégacaryocytes12. Il s’ensuit une thrombopénie fœtale et une augmentation du risque d’hémorragie.
La gravité de la thrombopénie n’est pas toujours corrélée à la gravité des épisodes hémorragiques; de nombreux nouveau-nés souffrant de TFNAI sont gravement thrombopéniques sans hémorragie, tandis que chez d’autres, une thrombopénie modérée peut s’accompagner d’HIC catastrophiques. Sans que cela soit entièrement compris, nous savons que les HPA ne se trouvent pas exclusivement sur les plaquettes. Ils s’expriment aussi sur d’autres tissus, comme l’endothélium
Contrairement à la MHFN, l’allo-immunisation de la mère aux HPA tend à se produire au début de la grossesse et la TFNAI touche fréquemment la première grossesse d’une femme allo‑immunisée
Recherche d’antigènes HPA
Le laboratoire national de référence d’immunologie plaquettaire de la Société canadienne du sang (site Web en anglais) situé à Winnipeg, au Manitoba, effectue le typage HPA et HLA (antigène d’histocompatibilité humain) et le dépistage d’anticorps pour de nombreuses provinces canadiennes. Ces tests sont utilisés cliniquement pour évaluer la TFNAI, ainsi que l’état réfractaire aux plaquettes, le purpura post-transfusionnel et les anomalies de la fonction plaquettaire.
Dépistage des donneurs de plaquettes
Le laboratoire d’immunologie plaquettaire de Winnipeg détermine le typage HPA et HLA de tous les donneurs de plaquettes avant leur inscription au registre national de donneurs de plaquettes. Le typage sérologique des HPA est techniquement difficile, c’est pourquoi on utilise le génotypage HPA pour prédire le phénotype. Le laboratoire utilise la technologie HPA BeadChip de BioArray Solutions (Immucor, Warren, au New Jersey, É.-U.), qui détermine, à l’aide de sondes ciblées, le génotype des 22 antigènes HPA indiqués au tableau 1. La Société canadienne du sang recueille chaque jour des plaquettes par aphérèse auprès de donneurs HPA-1b/1b et conserve un stock national de plaquettes disponibles qui peuvent être utilisées en cas d’urgence chez les nouveau-nés souffrant d’une TFNAI causée par les anticorps anti‑HPA‑1a. L’étiquette finale des unités de plaquettes indique les génotypes HPA sur les plaquettes d’aphérèse spécifiques, ce qui permet de sélectionner rapidement les produits appropriés pour les utiliser chez les patients ayant une TFNAI. Par ailleurs, il est généralement possible de recruter des donneurs ayant d’autres génotypes HPA grâce au registre national aux fins de transfusion de plaquettes à des nouveau-nés dont la TFNAI est causée par d’autres anticorps (comme les anticorps anti-HPA-5b).
Épreuve diagnostique de la TFNAI
On confirme un diagnostic de TFNAI sur la base de l’incompatibilité des HPA de la mère et du nouveau-né ou de la mère et du père, et de la présence d’alloanticorps anti-HPA spécifiques chez la mère2.
Détection des anticorps anti-HPA maternels
La figure 2 présente le bilan diagnostique de la TFNAI, qui commence par la détection des anticorps anti-HPA chez la mère. Pour ce faire, le laboratoire d’immunologie plaquettaire de Winnipeg dispose de deux méthodes. La première est une méthode immunoenzymatique (méthode ELISA) qui utilise des antigènes HPA lyophilisés fixés à un puits. L’ajout de sérum maternel dans le puits entraîne la fixation des anticorps anti-HPA, s’il y en a, et un changement de couleur indique alors leur présence. La deuxième méthode utilise des billes recouvertes d’antigènes HPA. Les anticorps maternels se fixent aux billes et une IgG anti-humaine marquée par fluorescence permet de repérer les billes sur lesquelles se sont fixés des anticorps. On détecte alors la fluorescence à l’aide d’un instrument Luminex (Luminex, Austin, Texas, É.-U.). Il est important de noter que l’immunoglobine intraveineuse (IgIV) interférera avec ces deux méthodes de détection. Dans la mesure du possible, les échantillons doivent être envoyés avant l’administration d’IgIV. Quelle que soit la méthode utilisée, on peut déterminer la présence ou l’absence d’anticorps anti-HPA et identifier par présomption les anticorps en question. Le laboratoire est généralement en mesure de fournir cette information environ trois jours ouvrables après la réception de l’échantillon.
Figure 2 : Bilan diagnostique de la TFNAI au laboratoire d’immunologie plaquettaire de Winnipeg.
*Les durées sont approximatives et indiquées en nombre de jours ouvrables à partir de la réception de l’échantillon
Génotypage HPA
Quels que soient les anticorps anti-HPA présents chez la mère, le génotypage HPA des échantillons maternel, paternel et du nouveau-né est la prochaine étape dans le bilan diagnostique de la TFNAI. Pour ce faire, on utilise la même méthode que celle décrite plus haut pour les donneurs de plaquettes. On peut ainsi déterminer les incompatibilités entre la mère et le père ou le nouveau-né. On obtient les génotypes environ sept jours ouvrables après la réception de l’échantillon.
Test MAIPA
La dernière étape du diagnostic est le test MAIPA. Il s’agit d’un test ELISA modifié qui utilise des anticorps monoclonaux contre les glycoprotéines GPIIb/IIIa et GPIa/IIa pour capturer des antigènes de plaquettes lysées et les immobiliser dans un puits. On détecte alors la présence ou l’absence d’anticorps liés dans le sérum maternel grâce à un changement de couleur, comme dans le cas d’un test ELISA standard6. En fonction des anticorps présents chez la mère et des incompatibilités mère-père/nouveau-né déterminées grâce au génotypage, on analyse un pool de plaquettes ou des plaquettes spécifiques dont on connaît les génotypes HPA en présence de sérum maternel. On peut ainsi confirmer la spécificité d’un anticorps ou détecter une autre réactivité qui n’a peut-être pas été détectée lors du dépistage initial, possiblement en raison d’un anticorps rare. On effectue également un cross-match MAIPA des plaquettes paternelles et du sérum maternel. Le laboratoire d’immunologie plaquettaire produit un rapport final qui comporte tous les résultats du test MAIPA dans les 14 jours environ après la réception de l’échantillon.
Étant donné la nature effractive du prélèvement de sang fœtal, le génotype fœtal n’est généralement pas disponible avant la naissance, ce qui signifie que le diagnostic de TFNAI est provisoire, puisqu’il se fonde sur les échantillons maternel et paternel seulement. Le dépistage prénatal non effractif à l’aide de l’ADN fœtal acellulaire présent dans le plasma maternel n’est possible que pour l’antigène HPA-1a et est envoyé à un laboratoire de référence à l’étranger dans certains cas à haut risque.
Prise en charge de la TFNAI
Le groupe International Collaboration for Transfusion Medicine Guidelines (ICTMG) a récemment publié des recommandations pour la prise en charge de la TFNAI en se fondant sur les données probantes les plus récentes
Traitement prénatal
Comme la plupart des autres pays, le Canada ne dispose pas d’un programme de dépistage systématique des anticorps anti-HPA chez les femmes enceintes. Ainsi, on commence généralement le traitement prénatal chez les femmes dont la précédente grossesse avait été affectée. Étant donné le risque de HIC grave chez les premiers nés, un programme de dépistage efficace nécessiterait une intervention prénatale très précoce. À l’heure actuelle, nous manquons de paramètres cliniques et biologiques fiables pour identifier les fœtus présentant un risque élevé d’hémorragie et une fois que l’hémorragie s’est produite, peu de mesures peuvent être prises pour en atténuer les effets in utero
Un traitement prénatal possible consisterait en une transfusion plaquettaire intra-utérine au moyen d’une procédure semblable aux transfusions de globules rouges intra-utérines dans le cas de la MHFN. Pour autant, ce traitement est rarement utilisé en raison du risque élevé de complications (jusqu’à 11 %), notamment la perte fœtale
L’immunoglobine intraveineuse est maintenant considérée comme un traitement prénatal de première intention pour éviter la thrombopénie ou les complications hémorragiques de la TFNAI. Étant donné qu’il est difficile d’effectuer des essais randomisés dans ce domaine, nous manquons de données probantes sur le meilleur dosage et la meilleure période. Le groupe ICTMG laisse entendre qu’il convient de commencer un traitement hebdomadaire d’IVIg chez les femmes à risque élevé entre 12 et 16 semaines de grossesse
Traitement postnatal
Bien que les données probantes guidant la prise en charge postnatale de la TFNAI soient également limitées, il est généralement admis qu’il faut transfuser des plaquettes sans tarder à un nouveau-né thrombopénique24. La transfusion prophylactique de plaquettes est fortement recommandée pour maintenir le compte de plaquettes au-dessus de 30 x 109/l
Pour les nouveau-nés souffrant d’hémorragies graves, l’ICTMG et d’autres groupes recommandent la transfusion immédiate de plaquettes jusqu’à un seuil de 50 x 109/l pendant au moins sept jours5, 20.
On s’est aussi demandé quel type de produit plaquettaire optimal pouvait être utilisé pour traiter les nouveau-nés ayant la TFNAI : les plaquettes compatibles (plaquettes HPA spécifiques ou plaquettes maternelles), ou les plaquettes aléatoires. Le groupe ICTMG a récemment apporté des clarifications à ce sujet à l’occasion d’un examen systématique par Baker et al. visant à évaluer les données en faveur de la prise en charge postnatale de la TFNAI
Au vu de ces études, le groupe ICTMG recommande d’administrer des plaquettes HPA spécifiques à titre de prophylaxie et en cas d’hémorragie active chez les nouveau-nés ayant la TFNAI si elles sont disponibles immédiatement
Outre la transfusion plaquettaire et le traitement symptomatique, on utilise parfois l’IgIVg et/ou des corticostéroïdes après la naissance, même si les données probantes sont insuffisantes à l’heure actuelle pour évaluer leurs éventuels bienfaits24.
Immunoprophylaxie
Dans le cas de la MHFN, l’administration d’anti-D (RhIg) aux femmes enceintes D-négatives peut prévenir l’allo-immunisation. L’élaboration d’une méthode similaire visant à éviter la production d’anticorps anti-HPA-1a suscite l’intérêt, et des travaux de recherche sont en cours à cette fin. Un anticorps anti-HPA-1a recombiné a été testé chez les humains et s’est révélé efficace pour ignorer les plaquettes HPA-1a positives
Ressources de la Société canadienne du sang
Veuillez consulter les lettres aux clients suivantes de la Société canadienne du sang :
- Lettre aux clients no 2020-01, Ajout des résultats HLA/HPA sur l’étiquette finale des plaquettes d’aphérèse, publiée le 20 janvier 2020
- Lettre aux clients no 2020-10, Ajout des résultats HLA/HPA sur les étiquettes finales des plaquettes d’aphérèse, publiée le 2 mars 2020.
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